Mathematisch Naturwissenschaftliche Fakultät I Institut für Biologie Diplomarbeit zum Erwerb des akademischen Grades Diplom-Biologin Entwicklung eines Kleintiermodells zur Evaluierung von Impfstoffen gegen Retroviren vorgelegt von Annekathrin Möller angefertigt in der Arbeitsgruppe Retrovirus-induzierte Immunsuppression am Robert Koch-Institut Berlin, im August 2007 Inhaltsverzeichnis 1. Einleitung..................................................................................................................... 7 1.1 Retroviren.................................................................................................................. 7 1.1.1 Taxonomie.......................................................................................................... 8 1.1.2 Morphologie retroviraler Partikel......................................................................... 9 1.1.3 Genomstruktur...................................................................................................10 1.1.4 Retrovirale Proteine...........................................................................................11 1.1.4.1 Gruppenspezifische Antigene.....................................................................11 1.1.4.2 Enzyme......................................................................................................11 1.1.4.3 Virale Hüllproteine......................................................................................12 1.1.4.4 Akzessorische und regulatorische Proteine................................................13 1.1.5 Lebenszyklus.....................................................................................................14 1.2 Humanes Immundefizienzvirus (HIV)........................................................................15 1.3 Gammaretroviren......................................................................................................17 1.3.1 Felines Leukämievirus (FeLV)...........................................................................18 1.3.2 Porcines Endogenes Retrovirus (PERV)............................................................18 1.3.3 Gibbon Ape Leukemia Virus (GaLV)..................................................................19 1.3.4 Koala-Retrovirus (KoRV)...................................................................................19 1.4 Zielstellung der Arbeit...............................................................................................21 2. Material und Methoden...............................................................................................23 2.1 Material.....................................................................................................................23 2.1.1 Chemikalien.......................................................................................................23 2.1.2 Verbrauchsmaterialien.......................................................................................24 2.1.3 Geräte...............................................................................................................25 2.1.4 Kommerzielle Kits..............................................................................................26 2.1.5 Zellen.................................................................................................................26 2.1.5.1 Eukaryotische Zellen..................................................................................26 2.1.5.2 Bakterien....................................................................................................26 2.1.6 Nährmedien.......................................................................................................26 2.1.7 Puffer und Lösungen.........................................................................................27 2.1.8 Antikörper..........................................................................................................28 2.1.9 Primer und Sonden............................................................................................28 2.1.10 Vektoren............................................................................................................29 2.2 Methoden..................................................................................................................30 2.2.2 Mikrobiologische Methoden...............................................................................30 2.2.2.1 Kultivierung und Aufbewahrung von Bakterien...........................................30 2.2.2.2 Bestimmung der Zelldichte.........................................................................30 2.2.2.3 Herstellung chemokompetenter Bakterien..................................................31 2.2.2.4 Transformation chemokompetenter Bakterien............................................31 2.2.2.5 Expression rekombinanter Proteine............................................................31 2.2.3 Molekularbiologische Methoden.........................................................................32 2.2.3.1 Agarose-Gelelektrophorese........................................................................32 2.2.3.2 Polymerase-Kettenreaktion (Polymerase Chain Reaction, PCR)................32 2.2.3.3 Real-time quantitative PCR........................................................................33 2.2.3.4 Kolonie-PCR ..............................................................................................35 2.2.3.5 Aufreinigung von PCR-Produkten...............................................................35 2.2.3.6 Gelextraktion..............................................................................................35 2.2.3.7 Plasmid-Präparation aus Bakterien............................................................36 2.2.3.8 Photometrische Bestimmung von DNA-Konzentrationen............................36 2.2.3.9 Restriktionsverdau......................................................................................36 2.2.3.10 Ligation.......................................................................................................37 2 2.2.3.11 Sequenzierung...........................................................................................37 2.2.3.12 cDNA-Synthese..........................................................................................37 2.2.3.13 Isolation genomischer DNA........................................................................38 2.2.4 Zellbiologische Methoden..................................................................................38 2.2.4.1 Kultivierung und Passagierung...................................................................38 2.2.4.2 Kryokonservierung und Auftauen von Zellen..............................................38 2.2.4.3 Bestimmung der Lebendzellzahl.................................................................39 2.2.4.4 Isolierung von PBMCs mittels Dichtegradientenzentrifugation....................39 2.2.4.5 Etablierung einer Tumorzelllinie .................................................................39 2.2.4.6 Aufschluss eukaryotischer Zellen (Proteinase K)........................................40 2.2.4.7 Aufschluss eukaryotischer Zellen (RIPA-Lyse)...........................................40 2.2.5 Virologische Methoden......................................................................................40 2.2.5.1 Ultrazentrifugation......................................................................................40 2.2.5.2 Isolation viraler RNA...................................................................................41 2.2.5.3 Erzeugung / Gewinnung virushaltigen Zellkulturüberstandes......................41 2.2.5.4 Titration virushaltiger Zellkulturüberstände.................................................41 2.2.5.5 Neutralisationsassay..................................................................................42 2.2.6 Proteinbiochemische Methoden.........................................................................42 2.2.6.1 Aufreinigung rekombinanter Proteine.........................................................42 2.2.6.2 Proteinbestimmung nach Bradford.............................................................43 2.2.6.3 SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese (SDS-PAGE).................................43 2.2.6.4 Konzentration von Proteinlösungen............................................................44 2.2.7 Immunologische Methoden................................................................................45 2.2.7.1 Immunisierung............................................................................................45 2.2.7.2 Western Blot...............................................................................................45 2.2.7.3 Strippen......................................................................................................46 2.2.7.4 Epitopkartierung.........................................................................................46 2.2.7.5 Enzyme Linked Immunosorbant Assay (ELISA).........................................46 2.2.7.6 KoRV p27Gag Capture ELISA....................................................................47 3. Ergebnisse..................................................................................................................49 3.1 Untersuchung der Übertragungswege des Koala-Retrovirus.....................................49 3.1.1 Etablierung eines KoRV-Kleintiermodells...........................................................49 3.1.2 „Rotationsversuch“.............................................................................................49 3.1.3 Isolation viraler RNA aus Kot, Urin und Speichel...............................................51 3.1.4 Provirusnachweis in Blut und Organen infizierter Ratten....................................53 3.1.5 Charakterisierung / Optimierung bestehender Real-time PCR- Systeme...........55 3.2 Wirtsspektrumanalyse in vitro...................................................................................56 3.3 Einfluss des Komplementsystems auf eine KoRV-Infektion......................................58 3.4 Proviruslast in Koalas einer Zuchtkolonie..................................................................59 3.5 Verringerung der Virusreplikation in vitro..................................................................60 3.5.1 Inkubation mit 5-Aza-2‘-desoxycytidin und 5-Brom-2‘-desoxyuridin....................60 3.5.2 Sequenzierung des KoRV-env...........................................................................61 3.6 Etablierung eines KoRV p27Gag Capture ELISAs....................................................62 3.6.1 Vorbereitungen..................................................................................................63 3.6.2 Expression und Aufreinigung der rekombinanten p27Gag-Fragmente...............63 3.6.3 Aufreinigung von p27Gag-Antikörpern aus Ziegen- und Rattenserum...............64 3.6.4 Test des Systems..............................................................................................65 3.7 Immunisierungsstudie...............................................................................................65 3.7.1 Vorbereitungen..................................................................................................65 3.7.2 Expression und Aufreinigung der rekombinanten p15E-Konstrukte....................66 3.7.3 Untersuchung der Antikörperantwort in Western Blot und Neutralisationsassay67 3.7.4 Epitopkartierung.................................................................................................68 3 4. Diskussion..................................................................................................................70 4.1 Untersuchung der Übertragungswege des Koala-Retrovirus.....................................70 4.1.1 „Rotationsversuch“ / Isolation viraler RNA aus Kot, Urin und Speichel...............70 4.1.2 Provirusnachweis und Tumorbildung in infizierten Ratten..................................72 4.2 Wirtsspektrumanalyse in vitro...................................................................................73 4.3 Einfluss des Komplementsystems auf eine KoRV-Infektion......................................75 4.4 Proviruslast in Koalas einer Zuchtkolonie..................................................................77 4.5 Verringerung der Virusreplikation in vitro..................................................................78 4.6 Etablierung eines KoRV p27Gag Capture ELISAs....................................................80 4.7 Induktion neutralisierender Antikörper gegen KoRV-Hüll- proteine............................81 4.7.1 Notwendigkeit von Impfstoffen gegen Retroviren...............................................81 4.7.2 p15E-Immunisierungsstudien.............................................................................82 5. Zusammenfassung.........................................................................................................85 Literaturverzeichnis...........................................................................................................86 Danksagung........................................................................................................................94 Anhang................................................................................................................................95 Statistik ............................................................................................................................95 ELISA Rotationsversuch...............................................................................................95 KoRV-Neutralisationsassay Immunisierungsstudie BfR................................................96 KoRV-Neutralisationsassay Immunisierungsstudie RKI................................................98 KoRV-Neutralisationsassay Rotationsversuch............................................................101 Proviruslast in verwandten Koalas..............................................................................103 Eigenständigkeitserklärung.............................................................................................104 4 Abbildungsverzeichnis Abb. 1.1: Schematischer Aufbau eines Retrovirus ................................................................ 9 Abb. 1.2: Schematische Darstellung der retroviralen Genomorganisation der in das Zellgenom integrierten Provirus-DNA ...........................................................................10 Abb. 1.3: Schematische Darstellung eines transmembranen Hüllproteins............................13 Abb. 1.4: Schematische Darstellung der Konformationsänderungen des TM-Proteins während der Fusion zellulärer und viraler Membranen ................................................13 Abb. 1.5: Schematische Darstellung des Infektionszyklus von Retroviren ...........................15 Abb. 1.6: Vergleich von Virusstammbäumen und Stammbäumen der Säugetierwirte ..........17 Abb. 2.1: Schematische Darstellung des Expressionsvektors pCal-n und der integrierten Multiple Cloning Site (MCS) .........................................................................................29 Abb. 2.2: Funktionsprinzip der TaqMan- Sonden..................................................................34 Abb. 2.3: Schematische Darstellung eines Capture ELISAs ................................................48 Abb. 3.1: Schematische Darstellung des „Rotationsversuches“............................................49 Abb. 3.2: Bestimmung von AK-Mengen in Rattenseren........................................................50 Abb. 3.3: Western Blot zur Testung von Seren auf KoRV p15E-AK......................................50 Abb. 3.4: KoRV-Neutralisationsassay Rotationsversuch.......................................................51 Abb. 3.5: KoRV-env- und pol-spezifische Two-Step RT-PCR zum Nachweis der Funktionalität des Kits...................................................................................................52 Abb. 3.6: KoRV-env-spezifische Two-Step RT-PCR zur Bestimmung der Nachweisgrenze 52 Abb. 3.7: KoRV-env- und pol-spezifische Two-Step RT-PCR ..............................................53 Abb. 3.8, Abb. 3.9: KoRV-env-spezifische PCR auf genomischer DNA aus PBMCs ............53 Abb. 3.10: KoRV-env-spezifische PCR auf genomischer DNA aus Organen der Ratte 86/3.54 Abb. 3.11: KoRV-env-spezifische PCR auf genomischer DNA aus Organen der Ratten 87/4 und 88/4 ......................................................................................................................54 Abb. 3.12, Abb. 3.13: Real-time PCR auf Zelllysat KoRV-infizierter rat1-Zellen....................55 Abb. 3.14: Vergleich zweier Real-time-PCRs.......................................................................56 Abb. 3.15: Standardverdünnungsreihe des linearisierten rp15E-tragenden pCal-n-Vektors..56 Abb. 3.16: PERV-env-spezifische PCR auf Zelllysaten ........................................................57 Abb. 3.17: KoRV-env-spezifische PCR auf Zelllysaten ........................................................58 Abb. 3.18: KoRV- und PERV-env-spezifische PCR auf rat1-Zelllysaten...............................58 Abb. 3.19: KoRV-env-spezifische PCR auf Zelllysaten ........................................................59 Abb. 3.20: Alter, Geschlecht und Aufenthaltsort der untersuchten Individuen.......................59 Abb. 3.21: Anzahl der KoRV-Kopien pro Zelle......................................................................60 Abb. 3.22: Bestimmung der TCID50/ml von Zellkulturüberständen nach Titration auf 293- Zellen............................................................................................................................61 Abb. 3.23: Vergleich von KoRV-env-Sequenzen..................................................................62 Abb. 3.24: Western Blot Rotationsversuch...........................................................................62 Abb. 3.25: ELISA Rotationsversuch .....................................................................................63 Abb. 3.26: SDS-PAGE der überexprimierten Gag-Fragmente, Coomassie-Färbung............64 Abb. 3.27: Western Blot der überexprimierten Gag-Fragmente............................................64 Abb. 3.28: Western Blot zur Kontrolle der Antikörperaufreinigung........................................65 Abb. 3.29: Schematische Darstellung der rekombinanten KoRV p15E-Konstrukte...............66 Abb. 3.30: SDS-PAGE nach Expression bzw. vor Immunisierung .......................................66 Abb. 3.31: Western Blot zur Testung der Immunisierungsseren auf p15E-Antikörper...........67 Abb. 3.32: Western Blot zur Testung der Immunisierungsseren auf p15E-Antikörper...........67 Abb. 3.33: KoRV-Neutralisationsassay Immunisierungsstudie RKI.......................................68 Abb. 3.34: KoRV-Neutralisationsassay Immunisierungsstudie BfR.......................................68 Abb. 3.35: Epitopkartierung..................................................................................................69 Abb. 3.36: Vergleichende Darstellung zweier Epitopkartierungen.........................................69 Abb. 4.1: Übersicht über RaLV- und c-ras-Sequenzen, die an der Bildung des RaSV beteiligt sind ..............................................................................................................................73 Abb. 4.2: Schematische Darstellung der Komponenten und Effektormechanismen des Komplementsystems ...................................................................................................76 Tabellenverzeichnis Tab. 2.1: Übersicht über verwendete eukaryotische Zellen ..................................................26 Tab. 2.2: Übersicht über verwendete Primer und Sonden ....................................................28 Tab. 2.3: Gelzusammensetzung...........................................................................................44 Tab. 3.1: Wirtsspektrumanalyse in vitro................................................................................57 6 1. Einleitung 1. Einleitung Während in den vergangenen Jahrhunderten vor allem bakterielle Infektionen, wie Pest (Y. pestis), Cholera (V. cholerae) und Tuberkulose (M. tuberculosis) Verursacher von großen Pandemien mit hoher Letalität waren, haben in den letzten Jahrzehnten Virusinfektionen ei- nen zunehmend höheren Stellenwert eingenommen. Lenti- oder Coronaviren sowie Viren zahlreicher anderer Genera verbreiten sich durch die neugewonnene Mobilität des Men- schen schnell weltweit und stellen neue Herausforderungen an die Entwicklung effektiver Therapien und präventiver Impfstoffe. Antivirale Medikamente sind oft mit starken Nebenwir- kungen assoziiert, aber auch mit hohen Kosten, und häufig können sie das Leben des Pati- enten nur verlängern ohne ihn zu heilen. Die vielversprechendste Strategie zur Bekämpfung von Virusepidemien ist deshalb nach wie vor die präventive Vakzinierung. Die großen Erfol- ge von Impfkampagnen gegen das Pocken- oder Poliovirus sprechen für die Entwicklung von Impfstoffen zum Schutz gegen pathogene Viren. 1.1 Retroviren Die Erforschung von Retroviren begann um 1910 mit den Arbeiten von Rous, Ellermann und Bang. Sie stellten zellfreie Extrakte aus Tumorzellen von Hühnern her und konnten anschlie- ßend zeigen, dass eine Injektion dieser Extrakte bei gesunden Tieren die Ausbildung von Tumoren verursachte. Die Theorie, dass ein RNA-Genom als Matrize für die DNA Synthese dienen könnte, wurde 1970 durch den Nachweis der Existenz einer viralen RNA-abhängigen DNA-Polymerase, der Reversen Transkriptase (RT), bestätigt (Baltimore; Temin und Mizuta- ni, 1970). Bis dahin war, dem zentralen Dogma der Molekularbiologie folgend, angenommen worden, dass ausschließlich DNA in RNA umgeschrieben werden kann, nicht aber umge- kehrt. Lange Zeit waren Retroviren nur in der Tierwelt bekannt, bis 1971 das humane Spu- maretrovirus (HSRV) aus menschlichem Gewebe isoliert werden konnte. R. Gallo brachte 1980 erstmals ein Retrovirus mit der Tumorgenese beim Menschen in Zusammenhang. Das von ihm beschriebene humane T-Zell Leukämie Virus (HTLV) gilt als Auslöser von T-Zell- Leukämien. 1983 identifizierten L. Montagnier und R. Gallo das humane Immundefizienzvi- rus HIV-1 als Retrovirus und Auslöser der Immunschwächekrankheit AIDS. Retroviren können horizontal durch Infektion weitergegeben werden, aber auch vertikal durch Vererbung über die Keimbahn. Die Genome vieler Tierarten enthalten endogene Pro- viren als normale Gene, beispielsweise machen diese bis zu 8% des menschlichen Genoms aus. Die Integration der viralen DNA erfolgt an vielen Stellen des Wirtsgenoms und führt zu Wiederholungen kurzer Nukleotidfolgen an den Zielstellen, die je nach Art des retroviralen Elementes vier, fünf oder sechs Nukleotide umfassen. Während die meisten Insertionen kei- ne offensichtliche Funktion haben und häufig als parasitäre (Doolittle & Sapienza, 1980; Or- gelund Crick, 1980) oder junk-DNA bezeichnet werden, spielen einige endogene Retroviren 7 1. Einleitung wichtige Rollen in der Wirtsbiologie. Unter anderem sind die Regulation von Transkriptions- vorgängen (Medstrand et al., 2001 a; b), die Kontrolle von Zellfusionsprozessen während der plazentalen Entwicklung (Blond et al., 2000; Rote et al., 2004) und die Vermittlung von Resistenzen gegenüber exogenen retroviralen Infektionen (Ponferrada et al., 2003) beschrie- ben worden. Endogene Retroviren sind jedoch auch mit Autoimmunerkrankungen in Verbin- dung gebracht worden (Tenenbaum et al., 1994), obwohl ihnen eine ursächliche Wirkung bis jetzt noch nicht nachgewiesen werden konnte. 1.1.1 Taxonomie Historisch wurden die Retroviren zunächst nach ihrem elektronenmikroskopischen Erschei- nungsbild in Typ A, B, C oder D-Retroviren eingeteilt. Später folgte eine Klassifikation, die auch biochemische Eigenschaften und den Zelltropismus berücksichtigte. Die Klassifikation unterschied Onkornaviren, Spumaviren und Lentiviren. Die aktuelle, zur Zeit verbindliche Ta- xonomie durch das International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV) unterteilt die Retroviren vor allem aufgrund ihrer genetischen Verwandtschaftsverhältnisse wie folgt in sieben Gattungen: Familie: Retroviren (Retroviridae) Unterfamilie: Orthoretroviren (Orthoretrovirinae) Gattung (Genus): (cid:302)-Retrovirus (z.B. Rous-Sarkom-Virus (RSV)) (cid:533)-Retrovirus (z.B. Maus-Mammatumorvirus (MMTV)) (cid:534)-Retrovirus (z.B. Koala-Retrovirus (KoRV)) (cid:303)-Retrovirus (z.B. Humanes T-Zell-Leukämievirus 1 (HTLV-1)) (cid:304)-Retrovirus (z.B. Zander-Hautsarkomvirus (walleye dermal sarcoma virus, WDSV)) Lentivirus (z.B. Humanes Immundefizienzvirus 1 (HIV-1)) Unterfamilie: Spumaretroviren (Spumaretrovirinae) Gattung (Genus): Spumavirus (z.B. Simianes Foamyvirus (SFV)) Weiterhin wird zwischen exogenen und endogenen Retroviren unterschieden. Endogene Retroviren sind in das Genom aller Zellen des Organismus integriert und werden vertikal ü- ber die Keimbahn übertragen. Die Eliminierung endogener Retroviren durch Züchtung oder Haltung unter SPF-Bedingungen (Specified Pathogen Free) ist daher nicht möglich. Im Un- terschied zu den endogenen Retroviren erfolgt die Übertragung der exogenen Retroviren von Organismus zu Organismus. Unter bestimmten Umständen kann es jedoch auch ausgehend von endogenen Proviren zur Produktion exogener infektiöser Partikel kommen. Retroviren sind in der Regel wirtsspezifisch, jedoch gilt die Übertragung einiger über die Artgrenze hin- aus als gesichert (Koala-Retrovirus, Affen-Immundefizienzviren (SIV) oder Maus- Leukämievirus (MuLV)). Nach funktionellen Gesichtspunkten werden einfache und komplexe Retroviren unterschieden. Die einfachen Retroviren tragen lediglich Gene für die Strukturpro- 8 1. Einleitung teine der Viruspartikel und die viralen Enzyme. Die komplexen Retroviren verfügen darüber hinaus über Gene, deren Produkte regulatorische und akzessorische Funktionen erfüllen. Eine weitere Unterteilung stützt sich auf Tropismen: ecotrope Viren können nur diejenige Spezies infizieren, in der sie produziert worden sind, amphotrope Viren sind in der Lage spe- ziesübergreifend zu infizieren und xenotrope Viren können alle Spezies infizieren mit Aus- nahme derjenigen, in der sie produziert worden sind. 1.1.2 Morphologie retroviraler Partikel Retroviren haben einen Durchmesser von 80-130 nm und bestehen aus einem Kapsid sowie einer äußeren Hülle, die von der Zytoplasmamembran der Wirtszelle abgeleitet ist. Die Vi- rusmembran ist mit viralen Glykoproteinen assoziiert, welche sich aus zwei Polypeptiden, dem Oberflächenhüllprotein (surface glycoprotein, SU) und dem transmembranen Hüllprotein (TM) zusammensetzen. Sie lagern sich zu trimeren Komplexen, sogenannten Spikes, zu- sammen, die mit den Rezeptoren und Korezeptoren auf der Oberfläche der Zielzellen inter- agieren und so deren Infektion initiieren. Unter der viralen Hülle befindet sich eine Schicht aus Matrixproteinen (MA), welche durch aminoterminal angefügte Myristinsäurereste mit dem inneren Teil der Hüllmembran verbunden sind. Kapside treten je nach Virusgruppe als konusförmige (Lentiviren), zylindrische (Deltaretroviren) oder sphärische Gebilde (Foamyvi- ren) in Erscheinung. Sie enthalten neben den für den viralen Replikationszyklus wichtigen Enzymen Reverse Transkriptase (RT), Integrase (IN) und Protease (PR) außerdem zwei i- dentische Moleküle einzelsträngiger RNA. Abb. 1.1: Schematischer Aufbau eines Retrovirus (modifiziert; www.hiv.lanl.gov) 9 1. Einleitung 1.1.3 Genomstruktur Das Genom von Retroviren besteht aus zwei sieben bis zwölf Kilobasen (kb) langen RNA- Strängen positiver Polarität, die wie typische eukaryotische messenger RNAs (mRNA) am 5’- Ende eine 7-Methylguaninkappe und am 3’-Ende einen poly(A)-Schwanz tragen. Einfache Retroviren wie KoRV codieren drei virale Gene, nämlich gag (gruppenspezifisches Antigen, Gruppe von inneren Strukturproteinen), pol (für enzymatische Proteine) und env (Bestandtei- le der Virushülle). Am 5´- und am 3´-Ende wird die RNA von identischen R-Regionen („re- dundant“) abgeschlossen, die den Transkriptionsstartpunkt und ein Signal für die Terminati- on tragen. Auf den 5´-R-Bereich folgt die U5-Region, die invertierte Sequenzen für die Integ- ration des Provirus in das Wirtsgenom trägt. In direkter Nachbarschaft liegt die Primerbin- dungsstelle (PBS), an die ein Molekül zellulärer transfer RNA (tRNA) gebunden ist. Strom- abwärts der PBS befindet sich ein Spleißdonor (SD). Zwischen SD und der codierenden Re- gion für Gag liegt das Verpackungssignal ((cid:524)(cid:12)(cid:15)(cid:3)(cid:71)(cid:68)(cid:86)(cid:3)(cid:72)(cid:76)(cid:81)(cid:72)(cid:3)(cid:86)(cid:72)(cid:75)(cid:85)(cid:3)(cid:78)(cid:82)(cid:81)(cid:86)(cid:72)(cid:85)(cid:89)(cid:76)(cid:72)(cid:85)(cid:87)(cid:72)(cid:15)(cid:3)(cid:86)(cid:87)(cid:68)(cid:85)(cid:78)(cid:3)(cid:74)(cid:72)(cid:73)(cid:68)(cid:79)(cid:87)(cid:72)(cid:87)(cid:72)(cid:3)(cid:54)e- kundärstruktur ausbildet und unter anderem für die Dimerisierung mit einer weiteren genomi- schen RNA verantwortlich ist. Am Ende der codierenden Region für Pol befindet sich die Spleißakzeptorstelle (SA). Bei allen Retroviren entsteht durch Spleißen wenigstens eine kür- zere subgenomische mRNA, die in das Env–Produkt übersetzt wird. Stromabwärts der codierenden Region für Env befindet sich der Polypurintrakt (PP), der beim Umschreiben der retroviralen RNA in DNA als Primer für die Synthese des zweiten DNA-(+)-Strangs dient. Der U3-Bereich trägt mit Verstärker- (Enhancer) und Promotorberei- chen wichtige Motive für die Regulation der viralen Transkription. U5- und U3-Sequenzen stellen auf RNA-Ebene einfach („unique“) auftretende Sequenzen dar. In der proviralen DNA sind sie durch den besonderen Mechanismus der reversen Transkription an beiden Enden verdoppelt und bilden zusammen mit den R-Regionen die identischen langen terminalen Wiederholungssequenzen (long terminal repeat, LTR). Die 5´ untranslatierte Region (5´UTR) vom Transkriptionsstartpunkt der R-Region bis zum Translationsstartcodon des Gag/Pol- Fusionsproteins wird auch als Leader bezeichnet. Abb. 1.2: Schematische Darstellung der retroviralen Genomorganisation der in das Zellgenom integrierten Provirus-DNA (Modrow, 2003) 10