Fortpflanzung, Wachstum und Trockenschlaf des Afrikanischen Grabfrosches (Pyxicephalus adspersus TscHum, 1838) im Labor ALEXANDER HAAS Abstract Reproduction, growth, and estivation of the African bullfrog (Pyxicephalus adspersus TscHUDI, 1838) in the laboratory. Captive breeding of Pyxicephalus adspersus was achieved by simulating natural (dry season dormancy, rainfalls) and applying artificial (LH-RH hormone) stimuli. Larval development is very fast: GosNER stage 42 and 46 were reached by the first individuals in only 13 and 17 days, respectively (29 ± 1 °C). Unbranched long gill filaments is a conspicuous feature of early larval stages, and blue iridescence of the dorsum is characteristic for later stages. Larval keratodont row formula is 2(3+3)/3 or 2(2+2)/3. Larvae congregate in the aquarium and feed almost exclusively from the bottom of the tank. The Jargest larvae measured 68.6 mm total length (stage 41). Mean size at metamorphosis (stage 46) is 22.4 mm (n = 10). The pattern of longitudinal skin ridges on the dorsum of the animals does not change during ontogeny and is characteristic for each individual. Under the conditions described, the growth rates of both sexes are the same up to a body length of about 7 cm. A prolonged growth phase in males and a decrease of growth rate in females beyond 7 cm body length contribute to the pronounced sexual dimorphism in these frogs. Conditions for successful estivation in captivity are described. Key words: Anura: Ranidae: Pyxicephalus adspersus; reproduction; care in captivity; larval growth; metamorphosis; postmetamorphic growth; oral disk; sexual dimorphism; esti vation. Zusammenfassung Die Fortpflanzung von Pyxicephalus adspersus wurde durch Simulation natürlicher (Trocken schlaf, Beregnung) und Anwendung künstlicher (LH-RF Hormon) Stimuli erreicht. Die Entwicklung der Larven verlief sehr schnell: GosNER Stadium 42 und 46 wurden von einem Tier bereits 13 beziehungsweise 17 Tagen nach der Eiablage erreicht (29 ± 1 °C). Auffallend bei gerade geschlüpften Larven sind die fingerförmigen, unverzweigten, externen Kiemen. Später in der Entwicklung kennzeichnet insbesondere ein deutlich blau irisierender Rücken die Larven von P. adspersus. Die Homzähnchen des Mundfeldes sind in 2(3+3)/3 oder 2(2+2)/3 Reihen angeordnet. Wie im Freiland bilden die Larven auch im Aquarium Schwärme. Die Larven erreichten eine Gesamtlänge von maximal 68,6 mm. Bei der Metamorphose (Stadium 46) messen die Tiere durchschnittliche 22,4 mm (n = 10). Das Muster longitudinaler, dorsaler Hautleisten verändert sich während der Ontogenese nicht und kann als individuelles Er kennungsmerkmal genutzt werden. Unter den beschriebenen Bedingungen waren die Wachs tumsraten beider Geschlechter bis zu einer Körperlänge von ungefähr 7 cm gleich. Ein längeres Anhalten des anfänglich raschen Wachstums bei Männchen und eine Verlangsamung der Wachstumsrate der Weibchen tragen ab circa 7 cm Körperlänge zum extremen Sexual dimorphismus von P. adspersus bei. Die Bedingungen zur Durchführung einer Trockenruhe werden erläutert. Schlagwörter: Anura: Ranidae: Pyxicephalus adspersus; Fortpflanzung; Haltung; Wachs tum; Wachstum der Larven; Mundscheibe; Sexualdimorphismus; Trockenschlaf. Salamandra, Rheinbach, 30.6.1999, 35(2): 83-96. © 1999 Deutsche Gesellschaft für Herpetologie und Tetnrienkunde e.V. (DGHT) 83 ALEXANDER HAAS 1 Einleitung Das Verbreitungsgebiet der Grabfrösche aus der Gattung Pyxicephalus liegt im Afrika südlich der Sahara (PASSMORE & CARRUTHERS 1979, WAGER 1986, LAMBTRTS 1989, CHANNTNG et al. 1994). Es werden derzeit zwei Arten unterschieden: Pyxi cephalus adspersus und P. edulis (CHANNJNG et al. 1994). Die Art P. adspersus ist für ihren ausgeprägten Sexualdimorphismus bekannt (Abb. 1). Die Männchen werden bis über 20 cm lang, während die Weibchen in der Regel 10 cm, selten 13 cm Körperlänge eITeichen. Adulte Männchen entwickeln überdies einen auffallend massigen Kopf. P. adspersus pflanzt sich nach ausgiebigen Regenfällen (VAN DuK 1982) in flachen, temporären Gewässern fort. Gelaicht wird in der Regel tagsüber. Die Männchen sind hierbei teITitorial und aggressiv (BALINSKY & BALINSKY 1954, GROBLER 1972, P1CKER 1983, HAAGNER 1990). Jungtiere haben eine kontrastreiche Zeichnung mit unregelmäßigen Flecken auf leuchtend grünem Grund (Abb. 2). Ein gelblich grüner Medianstreifen ist sehr deutlich ausgebildet. Bis zur Geschlechtsreife verblas sen die Kontraste, die Tiere werden dunkler und der Rückenstreifen verschwindet. Männchen sind dorsal fast einheitlich olivgrün, mit Ausnahme von weißlichen Aufhellungen an den dorsolateralen Hautleisten insbesondere im Bereich der Schul terblätter. In der Achselgegend sind sie kräftig gelblich bis orange gefärbt. Der Rücken beider Geschlechter ist mit derben longitudinalen Hautleisten versehen. P. edulis unterscheidet sich von P. adspersus in mehreren Merkmalen (CHANNTNG et al. 1994): Der Sexualdimorphismus ist weniger ausgeprägt. Männchen eITeichen meist nur 12 cm Körperlänge (PARRY 1982, eig. Beob.). Das Ablaichen findet vorwiegend nachts statt und territoriales Aggressionsverhalten zwischen Männchen am Laichplatz ist für diese Art unbekannt. Die Fleckenzeichnung und der mediale Rückenstreifen sind bei Adulti beider Geschlechter vorhanden. In der Rücken zeichnung überwiegen Brauntöne sowohl bei Jungtieren als auch bei Adulti (PAss MORE & CARRUTHERS 1979: 114, Abb.: ,,Juvenile", PARRY 1982, WAGER 1986: Photo des Einbandes, eig. Beob.). Auf dem Trommelfell ist auch bei ausgewachsenen Tieren ein deutlicher weißer oder gelber Fleck vorhanden. Des weiteren können beide Arten an ihren Rufen unterschieden werden. Die Reproduktionsbiologie von P. adspersus ist in meh1iacher Hinsicht interes sant. Die Tiere verbringen Trockenperioden und, in der Summe, den größten Teil ihres Lebens unterirdisch. Sie überdauern dort eingegraben und von einem Kokon umgeben. Der Kokon wird durch tote Hautschichten (Stratum corneum) gebildet (PARRY & CAVTLL 1979, LovERJDGE & CRAYE 1979). In dieser Trockenruhe sind Stoffwechsel und Wasserverbrauch stark reduziert (Lo ERTDGE & WnHERS 1981). Nur starke Regenfälle sickern tief genug ins Erdreich und eITeichen die Frösche, die sodann aus dem Kokon schlüpfen und sich durch das Erdreich an die Oberfläche arbeiten. Die Männchen betreiben Brutpflege: sie bleiben am Laichgewässer bei den Larven und greifen Eindringlinge jeder Art an (CHANNJNG et al. 1994). Auch das Graben von Kanälen wurde beobachtet, um Larven das Entkommen aus austrocknen den Tümpeln zu ermöglichen (KoK et al. 1989). Die Zucht des Grabfrosches in Gefangenschaft wurde zwar bereits kurz beschrie ben (HERRMANN & KABTSCH 1991), jedoch mit nur wenigen Angaben zum Wachstum. Spärliche Daten zu Entwicklung und Wachstum liegen aus Freilandbeobachtungen vor (VAN WYK et al. 1992). HAYES & LICHT (1992) beschreiben das Wachstum nach der Metamorphose, machen jedoch keine Angaben zur Larvalentwicklung. Im 84 SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 Fortpflanzung, Wachstum und Trockenschlaf von Pyxicephalus adspersus Abb. l. Sexualdimorphismus von Pyxicephalus adspersus. Sexual dimorphism of the breeding group of P. adspersus. Abb. 2. Jungtier von Pyxicephalus adsper sus, ca. 6 cm Körperlänge. Juvenile of P. adspersus at approximately 6 cm snout-vent length. Abb. 3. Pyxicephalus adspersus Weibchen im Abb. 4. Zuchtgruppe während der Trocken Kokon am Ende einer sechsmonatigen Trok ruhe (bedeckender Ziegel abgehoben). Es kenruhe, unmittelbar vor der Rehydrierung. sind zwei Männchen und ein Weibchen sicht Cocooned female P. adspersus after six bar. months of estivation, just before rehydration. Dormant and cocooned breeding group (shel ter removed). Two males and one female are exposed. SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 85 ALEXANDER RAAS folgenden werde ich die Zucht und die Grundparameter der Larval- und Postlarval Entwicklung vorstellen und mit Daten aus der Literatur vergleichen. 2 Haltung der Adulti Seit fünf Jahren halte ich Gruppen von Pyxicephalus adspersus. Die Zucht gelang mit einer Gruppe, die ich 1995 im Tierhandel erwarb. Die fünf Tiere hatten eine Körperlänge von circa 3 cm. Sie wurden in Behältern unterschiedlicher Größe aufgezogen und bezogen schließlich ein ausgedientes Aquarium mit 120 cm Länge, 60 cm Höhe und 50 cm Tiefe. Der Behälter ist ohne Abdeckung. Als Substrat hat sich eine circa 10 cm hohe Schicht gewaschener und völlig trockener Flußsand bewährt, aber auch trockener Torf ist geeignet (HERRMANN & KAB1scH). Trockenes Substrat scheint den Tieren gut zu bekommen und hemmt die Ausbreitung von Bakterien. Eine Heizmatte (35 Watt, 50x70 cm) liegt, von einigen größeren Steinen gesichert, unter dem Sand. Als Lichtquelle dienen drei 20 Watt Halogenstrahler, die mit Winkeleisen an die obere Rückwand geklebt wurden. Heizung und Beleuchtung sind zusammen geschaltet und etwa 10 Stunden täglich in Betrieb. Das Substrat erreicht tagsüber lokal Temperaturen von circa 35 °C. Eine 25x25 cm messende Plastikschale von 10 cm Höhe dient als Wasserbecken. Sie steht abseits der Heizmatte auf dem Substrat und kann zur Reinigung bequem herausgenommen werden. Ein großer gewölbter Ziegel, unter dem alle Tiere Platz finden, dient als Tagesversteck. Die Tiere sind nachtaktiv und tagsüber selten außerhalb dieses Verstecks anzutreffen. Sie verlassen es nachts, um zum Beispiel das Wasserbecken aufzusuchen. Die Fütterung erfolgt gegen Ende oder nach der Beleuchtungsphase und nach Öffnen des Tagesverstecks. Gefüttert wird wöchentlich. Regenwürmer, Mäuse, Zophobas, Riesenschaben, Katzenfutter und Fleischstückchen nehmen die Frösche direkt von der Pinzette. Dem Futter setze ich meist Korvimin-MineralNitaminpulver zu. Mäuse werden lebend oder auch tot von der Pinzette angenommen. Bei der Fütterung mit lebenden Mäusen entwickeln die Grabfrösche eine überraschende Wendigkeit und Schnelligkeit. Die Tiere setzen Kot oft im Wasserbecken ab, so daß dieses meist täglich gewechselt und die Schale gereinigt werden muß. Trotz des beeindruckenden Größenunterschieds sind Männchen und Weibchen in der Regel verträglich. Ich hielt sie über die Jahre immer zusammen in einem Behälter. Sehr hungrige Männchen, die bei der Fütterung sehr aufgeregt und aggressiv werden können, versuchen aber mitunter ein Weibchen zu fressen. Bei gutem Fütterungszu stand der Männchen sind derartige Angriffe jedoch sehr selten. Dank der derben Haut und starker Gegenwehr der Weibchen gingen die wenigen beobachteten Attacken stets glimpflich ab. 3 Trockenruhe der Adulti Die Tiere verbrachten mehrfach Trockenruhen, bis zu zwei pro Jahr. Die Trockenruhe kann gezielt herbeigeführt werden. Dazu genügt das Herausnehmen des Wasserbek kens. Mitunter stellen die Frösche aber auch nach Phasen guter Fütterung spontan das Pressen ein und fangen an, einen Kokon (Abb. 3 und 4) zu bilden. Die Kokonbildung findet im beschriebenen Tagesversteck statt. Nach Beginn der Kokonbildung schloß ich die Öffnungen des Tagesverstecks zu etwa 80 % durch Anhäufen von Sand. Die Tiere beließ ich in der entstandenen fast geschlossenen Kammer. Es ist in dieser Situation nicht notwendig, daß sich die Tiere vollständig im Substrat vergraben können. Es muß hingegen darauf geachtet werden, daß während der Trockenruhe das 86 SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 Fortpflanzung, Wachstum und Trockenschlaf von Pyxicephalus adspersus Substrat völlig trocken ist und sich auch kein Kondenswasser bildet. Partielle Feuchtigkeit kann dazu führen, daß die Tiere im Kokon sterben und verschimmeln. Ferner muß man beachten, daß die Tiere nur mit porösen Substanzen in Berührung stehen. Sitzen sie direkt auf einer Plastik- oder Glasfläche, führt dies meist zur Bildung offener Wunden an den Kontaktstellen und, falls nicht erkannt, zum Tod des Tieres. Nach einer Übergangsphase von etwa einer Woche nach Beginn der Kokon bildung schalte ich die Heizung ab und die Trockenruhe wird bei Zimmertemperatur weitergeführt. In der Regel belasse ich die Tiere circa zwei Monate im Kokon. Die bisher längste Trockenruhe erstreckte sich über sechs Monate (Oktober 97 bis April 98). In dieser Zeit prüfte ich etwa einmal monatlich den Zustand der Tiere durch Aufdecken des Verstecks (Abb. 4) und vorsichtiges Berühren. Dabei reagierten sie anfangs deutlich durch Bewegung. Mit der Dauer der Ruhephase wurde der Kokon dicker. Es waren dann weniger Körperreaktionen bei den Tieren äußerlich festzustel len. Um eine Trockenruhe zu beenden, setze ich die Tiere in eine Plastikschale mit ungefähr 2 cm Wasserstand und besprühe sie zusätzlich wiederholt mit Wasser. Nach einer halben bis spätestens zwei Stunden sind die Tiere aus dem Kokon geschlüpft. Der Kokon wird dabei manchmal gefressen. In der Regel beginne ich erst eine Woche nach Ende einer Trockenruhe mit dem Füttern. Die Trockenruhe ist eine kritische Zeit: im August 97 und April 98 verstarben je ein Weibchen am Beginn, beziehungs weise kurz nach Beendigung der Trockenzeit. Die unmittelbare Todesursache blieb unklar. 4 Zucht 4.1 Zuchtbehälter Zum Zwecke der Zucht bereitete ich ein Beregnungsbecken (l 50x50x60 cm) mit flachem Wasserstand (6 cm) vor. Die Einrichtung bestand aus einem großen Wur zelholz, einigen Steinen, einer etwa tellergroßen Matte Filterwolle und einer mit Kies gefüllten Plastikschale (30x20 cm) als Sitzgelegenheit außerhalb des Wassers. Im Wasserbereich wurde auf Substrat verzichtet. Die Luft-und Wassertemperatur lag bei 24-28 °C. Zwei Pumpen, an die perforierte Schläuche angeschlossen waren, erzeug ten den Niederschlag. 4.2 Induktion der Reproduktion Zur Vorbereitung der Zucht verbrachten die Tiere zunächst eine zweimonatige Trockenruhe (Juli, August 97). Nach Ende der Trockenruhe überführte ich ein Männchen (17 cm) und zwei Weibchen (10 cm) (Abb. 1) in den Zuchtbehälter. Ich ließ die Beregnung zunächst zwei Tage ununterbrochen an und schaltete sie dann ab. Wie bei einem im Jahr davor gescheiterten Zuchtversuch konnte ich durch Trocken ruhe mit anschließender Beregnung alleine auch bei diesem Versuch keine Fort pflanzungsaktivität hervorrufen. Deshalb verabreichte ich nach zwei Tagen Bereg nung folgende Mengen des LH-RH-Agonisten des-gly1°,[D-Ala6]-LH-RH Ethyl amide (Sigma L4513, gelöst in physiologischer Kochsalzlösung): dem Männchen 4 µg und 3 µg um 9.00 Uhr bzw. 13.00 Uhr, dem Weibchen einmalig je 1 µg um 13.00 Uhr. Die Injektion wurde subkutan appliziert. Das Männchen reagierte bis zum Abend mit der Bildung graubrauner Brunftschwielen und heftigem Rufen. Die SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 87 ALEXANDER HAAS Abb. 5. REM-Aufnahmen einer Larve von Pyxicephalus adspersus; a) GoSNER Stadium 23, von ventral. Auffallend die fingerartigen, unverzweigten Filamente der externen Kiemen und das ventrale Adhäsionsorgan; b) Stadium 28, Ventralansicht, Mundfeld mit doppelreihigem Randpapillen-Besatz, Oberlippe mit breiter Unterbrechung des Papillensaums: c) Stadium 28, Keratodonten; d) Stadium 28, gesägter larvaler Oberkieferrand. SEM of a P. adspersus larva; a) GosNER stage 23, ventral view. Note the fingerlike, unbranched external gill filaments and the ventral adhesive organ; b) stage 28, ventral view. Oraldisk with doublerows of marginal papillae; upper lip showing broad gap of papillation; c) stage 28, keratodonts; d) stage 28, serrated larval upper jaw sheath. 88 SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 Fortpflanzung, Wachstum und Trockenschlaf von Pyxicephalus adspersus Abb. 6. P. adspersus in der Metamorphose; a) Stadien 40-42; b) Stadium 44. Metamorphosing P. adspersus; a) Stages 40-42; b) Stage 44. Eiablage erfolgte in derselben Nacht (2. September 1997). Beide Weibchen legten zusammen wurden viele Hundert Eier in Form von losen, sich flach am Grund ausbreitenden Klumpen. Entgegen den Angaben von HERRMANN & KABISCH (1991) konnte nicht beobachtet werden, daß die Eier einen Oberflächenfilm bilden. Die erfolgreiche Fortpflanzung fand über Nacht statt und konnte nicht beobachtet werden. Bestandteile des Fortpflanzungsverhaltens konnten jedoch zuvor (1.9., 20.00 Uhr) beobachtet werden, indem ich ein Weibchen dem Männchen zuschob. Im flachen Wasser sitzend, näherte sich das Männchen dem Weibchen und ergriff es von hinten um die Achsel. In dieser Position verharrte das Paar nur kurze Zeit. Bald darauf schob das Männchen das Weibchen unter sich durch, ohne es loszulassen. Das Weibchen gelangte schließlich mit seiner Kloake hinter die des Männchens und hob diese an. Das Weibchen entwand sich dann dem Männchen. Zur Eiablage kam es zwar hierbei noch nicht, aber dieser Ablauf entspricht Teilen des normalen Fortpflanzungs verhaltens (HERRMANN & KABISCH 1991). 5 Aufzucht der Larven und Jungtiere Der Laich wurde auf zwei flache, belüftete 50 1 Aquarien verteilt. Die Befruchtungs rate war gering (geschätzt circa 10 %). Von vielen Hundert Eiern waren nur etwa 120 befruchtet. Nach dem Schlüpfen der Larven entfernte ich alle unbefruchteten Eier. Geregelte Heizer hielten die Wassertemperatur auf konstant 29 ± 1 °C. Gefüttert wurde täglich mit zerriebenem TetraMin, TetraPhyll oder gefrorenen Cyclops Krebsen. Täglich ersetzte ich die Hälfte des Wassers durch abgestandenes Leitungs wasser. Ein Filter war nicht installiert. In unregelmäßigen Abständen wurden zu wissenschaftlichen Zwecken Stichpro ben von Larven entnommen, mit Chlorobutanol betäubt und getötet und in 4 % neutral gepuffertem Formalin fixiert. Fixierte Larven > 3 cm wurden per Hand mit einer Schublehre, kleinere Tiere unter dem Stereomikroskop mit geeichtem Meß okular vermessen. Die Stadien wurden anhand der Tabelle von GosNER (1960) bestimmt. Tiere nach der Metamorphose wurden lebend vermessen. SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 89 ' 1 ALEXANDER HAAS Die Unterbringung der Jungtiere erfolgte in Flachterrarien, die zur Hälfte direkt auf einer Heizmatte standen (Nachtabschaltung). Ein herausnehmbares Wasserbek ken stand im ungeheizten Teil. Aus hygienischen Gründen verzichtete ich auf Bodengrund. Eine Petrischale diente als Wasserbecken und ein Drittel des Bodens war mit einer Schaumstoffmatte abgedeckt, die feucht gehalten wurde. Die Boden temperatur betrug lokal bis zu 35 °C. Die Tiere hielten sich meist im beheizten Teil des Behälters auf, dabei konnte ich eine Körpertemperatur von 29,5 °C messen. Die Jungfrösche bekamen zunächst kleine Grillen und Wachsmaden zu fressen, später kamen Mehlwürmer, Zophobas, Regenwürmer und Schaben dazu. Bis zu einer Körpergröße der Frösche von 7-8 cm verabreichte ich Korvimin Mineral- und Vitaminpulver bei jeder Fütterung. Ab einer Größe von etwa 8 cm gewöhnten sich die Frösche an die Fütterung mit Katzenfutter. Dem Futter wurde dann nur noch ein bis zweimal wöchentlich Korvimin zugesetzt. 6 Ergebnisse 6.1 Larvalmorphologie, Verhalten, Wachstum und Metamorphose Einige Merkmale der Pyxicephalus-Larven wurden bereits publiziert (vAN DuK 1966, LAMBIRIS 1989). Es soll jedoch folgendes erwähnt werden: Auffällig bei den frisch geschlüpften Larven sind fächerförmig angeordnete lange Kiemenfilamente (Abb. Sa). Im Gegensatz zu denen der Larven vieler anderer Froscharten sind sie unver zweigt. Auf der Ventralseite der jungen Larven ist ein mediales Adhäsionsorgan ausgebildet (Abb. Sa). Solange die Kiemenfilamente nicht resorbiert sind (bis Gosner-Stadium 24/25), schwimmen die Larven bevorzugt auf dem Rücken. Abbil dung Sb zeigt ferner das Mundfeld derLarven, insbesondere die dorsale Lücke im Randpapillen-Besatz. Die Oberlippe trägt distal zwei vollständige und proximal meist drei unterbrochene Reihen Keratodonten, die Unterlippe stets drei vollständige Reihen: Keratodonten-Formel 2(3+3)/3. Gelegentlich fehlt die am weitesten proxi mal gelegene der drei unterbrochenen Oberlippenreihen (2(2+2)/3) (LAMBIRIS 1989, eig. Beob.). Die Keratodonten sind langestreckt, schmal und nur im distalen Drittel gezähnt (Abb. Sc). Die Ausbildung des Kieferrandes ist in Abbildung 5d zu erkennen. Die Larven sind dorsal stark pigmentiert und nahezu schwarz. Die Bauchdecke ist schwach pigmentiert und die Darmschlingen sind gut zu erkennen. Der Schwanz zeigt eine leichte Verdichtung der Pigmentierung im distalen Drittel. Die Larven erinnern aufgrund ihrer Pigmentierung und permanenter Schwimmbewegungen zunächst an Larven der Gattung Bufo. Sie unterscheiden sich aber von diesen durch einen relativ langen Schwanz (60-65 % der Gesamtlänge, im Mittel 0,61 %, n = 35), und in Dorsalansicht eher parallele Körperflanken (meist rhomboide Körperform bei Bufo). Der Rücken und die Flanken halbwüchsiger bis ausgewachsener Larven irisieren deutlich blau. Der für Jungfrösche typische gelblichgrüne Mittelstreifen und die Rückenfleckung treten erstmals bei Larven des Stadiums 40 auf (Abb. 6a). Die Larven wuchsen innerhalb der Population sehr unterschiedlich (Abb. 7). Ein Teil der Larven blieb im Wachstum deutlich hinter den anderen zurück. Einige der zurückgebliebenen Larven starben schließlich mit Ödembildungen. Jedoch war insgesamt keine ungewöhnlich hohe Mortalität der Larven zu beobachten, im Gegensatz zu den Erfahrungen von HERRMANN & KABISCH (1991). Die maximal erreichte Körperlänge der Larven betrug 68,6 mm (Stadium 41). Während die Larven im Freiland tagsüber Temperaturen von circa 29 °C und nachts 18 °C ausgesetzt sind (VAN WYK et al. 1992), wurden die Tiere im Labor bei 90 SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 Fortpflanzung, Wachstum und Trockenschlaf von Pyxicephalus adspersus 801 0,7 ego 0,6i oO 00 o(;) 0~ 91:JBo ee§tlo8g 60~ 80 ~ 0 Oo 0,5 0 a 00 Oo o 8o0O 0 0 ~ 0,4 42001 ~ 0 0 0 0 00 § § ..f... : 00,,23~ O8o ~ 0,1 8 0 0 5 10 15 20 25 20 25 30 35 40 45 T ST 80 45 ~~ 0 § 40 0§8 60 80~~8 C1/-J 3350 8 § 0o 0 go 00 0O .c...J, 40 0~ 8oo°0 0o0 o g 0 0 e80 8 20 080 25 8 og oo oo 8 20 0 5 10 15 20 25 30 20 25 30 35 40 45 T ST Abb. 7. Wachstum der Larven von P. adspersus bei 29 ± 1° C Wassertemperatur. Bestimmung der Stadien nach GoSNER (1960): basierend auf 11 Stichproben und insgesamt 62 Individuen. - GL Gesamtlänge in mm; T Alter in Tagen nach der Eiablage; SL Schwanzlänge in mm; rel. SL = GL/SL; ST Stadium nach GosNER (1960). Eleven samples comprising 62 individuals taking from the larval population of P. adspersus raised at 29 ± 1° C water temperature. - GL total length in mm; Tage in days after oviposition; SL tail length in mm; rel. SL = GL/SL; ST stage according to GoSNER (1960). konstant 29 °C gehalten. Dementsprechend verlief die Entwicklung noch rascher als unter natürlichen Bedingungen. Die Vorderbeine (Stadium 42) wurden beim ersten Tier bereits 13 Tagen nach der Eiablage frei, im Freiland erst nach 20 Tagen (VAN WYK et al. 1992). Der erste Landgang erfolgte am 15. Tag. Das Stadium 46 (Ende der Metamorphose) en-eichte das erste Tier nach 17 Tagen. Die Körperlänge der Tiere betrug beim Landgang 20-24 mm, im Mittel 22,4 mm (n = 10). Wie im Freiland so bilden Larven auch in Gefangenschaft Kongregationen, meist in einer Ecke des Beckens. Dabei waren stets fast alle Tiere der Population ununterbrochen im Schwarm in Bewegung, während nur wenige Tiere Ruhepausen am Boden einlegten. Die Nahrungsaufnahme erfolgte fast ausschließlich vom Boden des Beckens. Im Gegensatz zu Larven vieler anderer Froscharten suchten die Tiere die Wände und die Wasseroberfläche nur gelegentlich, aber nie systematisch nach Futter ab. Im Freiland kann man beobachten, daß die adulten Männchen nach dem Schlüpfen der Larven am Gewässer bleiben und Eindringlinge angreifen. Dabei muß es sich nicht unbedingt um die eigenen Nachkommen handeln (CHANNING et al. 1994). Im Labor reagierte das Männchen beim Hantieren im Beregnungsbecken weder vor noch nach der Eiablage mit Attacken. SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999 91 ' ' ALEXANDER HAAS 6.2 Postmetamorphes Wachstum Das postmetamorphe Wachstum der Frösche verfolgte ich an zehn Tieren. Diese Gruppe hielt ich zunächst zusammen, teilte sie dann aber 50 Tage nach Eiablage in zwei Gruppen auf (Abb. 8). Eine Gruppe wurde fortan von Herrn N. MEYER (Winterthur-Seen) versorgt und vermessen. Zunächst war die Nahrungsaufnahme noch mäßig. Ab circa 3 cm Körperlänge und bei tagsüber warmer Haltung fraßen die Tiere zunehmend mehr, und es schloß sich eine explosive Wachstumsphase an. Während die Weibchen ab einer Größe von 7 cm ihr Wachstum wieder deutlich verlangsamten, wuchsen die Männchen zwischen 8-12 cm unvermindert weiter (Abb. 8). In der Gruppe der Jungtiere konnten ab circa 8 cm Körpergröße Männchen und Weibchen unterschieden werden (Abb. 8). Die Männchen fallen dann nicht nur durch konstantes weiteres Wachstum, sondern auch durch einen zunehmend breiteren Kopf auf. In der Zeit raschen Wachstums ist besonders auf ausreichende Versorgung mit Mineralien zu achten. Die an den Nachzuchtpopulationen gemachten Messungen stehen in Einklang mit Beobachtungen, die ich in den Jahren zuvor bei der Aufzucht von Jungtieren aus dem Tierhandel machen konnte. Gelegentlich scheinen sich jedoch einzelne Männchen in ihrer Größenzunahme zunächst wie Weibchen zu entwickeln, um dann relativ spät noch einen Wachstumsschub zu erfahren (Abb. 8, „Pfeile 2"). Unterschiedliche Kehlfleckung als geschlechtsspezifisches Merkmal (HERRMANN & KABTSCH 1991) konnte ich nicht bestätigen. 160 1 "',. o O 8 2 cJ E 120 1 g o O / E ,"- .,. i ------ -------~ ---- .5 80 ~ g~ ~ g 9 .J CC ~ 40 1 O Population 1 J D. Population 2 0 0 50 100 150 200 250 T Abb. 8. Postmetamorphes Wachstum von je fünf Individuen in zwei Populationen. Die Weibchen (n = 7) verlangsamten bei einer Körperlänge von ca. 7 cm ihr Wachstum, während zwei Männchen mit zunächst unveränderter Rate weiterwuchsen (Pfeile 1). Ein Männchen (Pfeil 2) folgte zunächst dem Wachstumsprofil der Weibchen und durchlief relativ spät einen Wachstumsschub. KRL: Kopf-Rumpf-Länge; T: Alter in Tagen nach der Eiablage; t: verstorbenes Individuum. Postmetamorphic growth of ten individuals of P. adspersus kept in two populations. The different duration of the first explosive growth phase of males and females is clearly discernible (males: atTows 1): Beyond about 7 cm snout-vent length the growth of females (n = 7) slowed down substantially, whereas two males maintained their initial growth rate for a longer period of time (arrow !). One male first grew along the typical female trajectory, but then showed a late increase in growth rate (arrow 2). - KRL: snout-vent length; T: time after oviposition; t: individual died. 92 SALAMANDRA, Rheinbach, 35(2), 1999