动 物 学 研 究 2013，Dec. 34(6): 582−588 CN 53-1040/Q ISSN 0254-5853 Zoological Research DOI:10.11813/j.issn.0254-5853.2013.6.0582 氯胺酮和乌拉坦对猫视皮层细胞中刺激诱导的 c-fos 表达的影响 王 珂，朱 慧，陈翠云，李 鹏，金彩虹，王紫露，姜 三，华田苗* 安徽师范大学 生命科学学院，安徽 芜湖241000 摘要：氯胺酮（ketamine）和乌拉坦（urethane）对神经细胞活动的影响大小和机制尚存在争议。c-fos 是刺激依赖表达的立 早基因（immediate early genes），其表达量可反应神经细胞活动的强弱。该研究通过免疫组织化学方法比较观察乌拉坦和盐 酸氯胺酮急性麻醉对猫初级视皮层细胞中刺激依赖的c-fos蛋白表达的影响。结果显示，氯胺酮组和乌拉坦组初级视皮层各 层神经元密度与对照组无显著差异；乌拉坦组视皮层c-fos蛋白免疫阳性细胞密度和免疫反应强度与对照组无显著差异；而 盐酸氯胺酮组视皮层细胞中c-fos蛋白免疫阳性细胞密度及免疫反应强度均显著降低。即氯胺酮对视皮层细胞反应的抑制作 用较强，而乌拉坦的抑制作用不显著。 关键词：氯胺酮；乌拉坦；初级视皮层；视觉刺激；c-fos蛋白表达 中图分类号：Q344+.13 文献标志码：A 文章编号：0254-5853-(2013)06-0582-07 Effects of ketamine and urethane on stimulation-induced c-fos * expression in neurons of cat visual cortex Ke WANG, Hui ZHU, Cui-Yun CHEN, Peng LI, Cai-Hong JIN, Zi-Lu WANG, San JIANG, Tian-Miao HUA* College of Life Sciences, Anhui Normal University, Wuhu 241000, China Abstract: The effects of ketamine and urethane on neuronal activities remain in debate. As a member of immediate early genes family, the expression of c-fos is stimulation dependent and could be treated as an index to evaluate the strength of neural activities. In this study, SABC immunohistochemical techniques were applied to compare the c-fos expression in neurons of the primary visual cortex (V1) of cats and therefore, to evaluate the effects of acute anesthesia with ketamine HCl and uethane on inhibiting neural activities. Our results showed that compared with control cats, there were no significant differences with the average densities of Nissl-stained V1 neurons in each cortical layers of either urethane or ketamine anesthetized cats. In urethane anesthetized cats, neither the average densities nor the immunoreactive intensities of c-fos positive V1 neurons showed significant difference with that of control ones. However, both the average densities and immunoreactive intensities of c-fos positive V1 neurons in ketamine anesthetized cats decreased significantly compared with that of control and urethane anesthetized cats. These results suggested that ketamine has strong inhibitory effects on the activities of visual cortical neurons, whereas urethane did not. Keywords: Ketamine; Urethane; Primary visual cortex; Visual stimulation; c-fos protein expression 麻醉剂通过影响神经系统神经元和胶质细胞 （NMDA）受体活动的抑制和对 γ-氨基丁酸 a 型 的活动而达到镇静效应。氯胺酮（ketamine）和乌 （GABAa）受体活动的增强（Hara & Harris, 2002; 拉坦（urethane）是临床手术和动物实验中常用的 Jin et al, 2013; McCardle & Gartside, 2012）。但视觉 麻醉诱导和维持剂，探讨其对神经系统活动的影响 皮层的电生理研究结果显示，正常的乌拉坦麻醉剂 及作用机制对临床实践中麻醉剂的选择和神经科 量对单个神经元的自发和诱发放电活动无明显影 学研究设计均有重要的理论和实际价值。研究显 响或影响微小（Peng et al, 2011; Sceniak & Maciver, 示，氯胺酮和乌拉坦对中枢神经系统神经元活动可 2006），仅在高剂量时产生抑制作用，且作用机制 能有相似的影响，表现为对 N-甲基-D-天冬氨酸 可能与氯胺酮不同（Sceniak & Maciver, 2006）。导 收稿日期：2013-06-25；接受日期：2013-08-27 基金项目：国家自然科学基金（31171082）；安徽省教育厅重点项目（KJ2009A167）；安徽省学术与技术带头人后备人选学术科研活动经费 ∗通信作者（Corresponding author），E-mail: [email protected] 6期 王 珂等：氯胺酮和乌拉坦对猫视皮层细胞中刺激诱导的c-fos表达的影响 583 致以上结果不一致的重要原因可能与麻醉剂作用 50 mg/kg，至眨眼和缩腿反射消失为止，对照组注射 的物种和脑区有关（Xu et al, 2000, 2001）。为进一 剂量相当的生理盐水；麻醉完成后，将猫置于自然光 步探讨其作用机制，本研究通过比较观察氯胺酮和 下，以硫酸阿托品扩瞳，强闪光刺激双眼1 h；等待1 h 乌拉坦急性麻醉对猫初级视皮层神经元活动的影 后，将实验组和对照组猫深麻醉后开胸，经升主动脉 响，证实两者在不同物种和脑区间的效应差异。 依次灌注生理盐水及0.1 mol/L PBS缓冲液（pH 近期研究显示，氯胺酮对中枢神经系统可能具有 7.2~7.4，200 mL/kg，含4%多聚甲醛及2.5%戊二醛）； 抑制和兴奋双重作用。它既可通过阻断NMDA谷氨 开颅取全脑固定2 h，分离两侧初级视皮层并移入固定 酸受体来抑制神经元对刺激的反应（Jin et al, 2013）， 液（含4%多聚甲醛、2.5%戊二醛和30%蔗糖）中固定 又可通过结合非NMDA受体和类阿片受体以增加神 至组织沉底；制作连续冠状冰冻切片，厚40 μm，每 经元的兴奋性活动（Höffken et al, 2013; Howland, 隔10张切片取3张为一组，分别用于c-fos蛋白免疫组 2013; Kochs & Bischoff, 1994; Patel & Chapin, 1990）。 织化学标记、阴性对照和尼氏染色，每例取相应位置 氯胺酮对视皮层神经元的活动是以抑制还是兴奋为 的10组切片进行细胞计数和数据分析。 主以及作用的机制目前仍鲜见报道。 1.2 尼氏染色与c-fos免疫标记 c-fos 是刺激依赖表达的立早基因（immediate 0.5%甲苯胺蓝溶液用于尼氏染色，以确定皮层 early genes），在正常生理情况下处于低表达状态 分层并统计各层神经元密度。 （Nakadate et al, 2012），在缺氧、光、机械和疼痛 常规c-fos蛋白免疫标记分别用3% H O 、0.3% 2 2 等刺激作用下该基因快速、大量表达，其表达量可 TritonX-100及5%胎牛血清处理，然后滴加c-fos一抗 作为衡量相关神经元被激活的指标之一（Filipkowski, （兔抗鼠多克隆抗体，浓度为1:200，武汉博士德生 2000; Marchant & Morin, 2001; Poveda & Kretz, 2009; 物工程有限公司），4 ℃孵育24 h；PBS冲洗后滴加 Van der Gucht et al, 2005）。该基因编码的fos蛋白可 生物素标记二抗（羊抗兔lgG工作液，武汉博士德 与jun蛋白结合后作为第三信使进入胞核，调节靶基 生物工程有限公司），室温孵育20 min；PBS冲洗后 因转录，从而使刺激信号与基因表达偶联，参与某 滴加三抗（链霉卵白素过氧化物酶工作液，武汉博 些生理及病理活动的调节。 士德生物工程有限公司SABC），室温孵育20 min； 本研究采用免疫组织化学方法比较盐酸氯胺酮 DAB显色，梯度酒精脱水，二甲苯透明，中性树胶 和乌拉坦急性麻醉对猫初级视皮层中c-fos蛋白免疫 封片，显微镜下观察。阴性对照以PBS液代替一抗 阳性神经元密度及c-fos蛋白免疫反应强度的影响，以 进行孵育，其余步骤相同。 评价两种麻醉剂对视皮层神经元活动的影响程度。另 1.3 数据统计与分析 外，通过相应切片的尼氏（Nissl）染色来确定初级视 染色及免疫标记切片在Olympus BX-51显微镜 皮层各层的界限，并统计各层神经元的密度，以排除 下观察，用Image-Pro Express 6.0 图像分析软件进 神经元密度在实验组和对照组间可能存在的差异性。 行图像采集，定量统计并分析尼氏染色的神经元密 度、c-fos蛋白免疫阳性细胞密度和细胞光密度（IOD: 1 材料与方法 integrated optical density）值。选取初级视皮层中部 1.1 实验动物及组织取材 区域（皮层表面和白质几乎平行）进行定量统计。 实验用9例健康雄性猫（2~3 a, 2~2.5 kg），均购 每张尼氏染色切片在低倍镜下（×40）获取图 自芜湖市郊农贸市场，经检查无影响视力的折光系 像，在较高放大倍数下（×100）标出皮质各层次界 统和视网膜疾病。实验操作遵守国家健康中心关于 限（I、II~III、IV、V、VI层），并随机选取10个视 实验动物照料和使用的准则。 野测量皮质表面至各层上、下界限的垂直距离，取 实验猫随机分为3组，即盐酸氯胺酮（福建古田 平均值作为相邻切片中皮质各层边界定位的依据。 药业有限公司，国药准字H35020148）组、乌拉坦（曹 在高倍镜（×400）下分别于皮质各层选取10个视野 杨第二中学化工厂，批号870530）组和对照组（注射 （样方大小50 μm×50 μm）计数尼氏染色神经元和 生理盐水）各3只，黑暗饲养24 h，以使视皮层细胞的 c-fos免疫阳性细胞数，取平均值并换算成细胞密度 c-fos表达降至最低水平。红外光下实施麻醉剂肌肉注 （cells/mm2）。从每张免疫标记切片中随机选取80 射，盐酸氯胺酮组基础剂量为40 mg/kg，乌拉坦组为 个c-fos阳性细胞，用图像分析软件测定光密度值， 584 动 物 学 研 究 34卷 取平均值代表免疫阳性细胞的免疫反应强弱。 元结构清晰，细胞形态、大小各异，胞体和突起呈 所有数据用mean±SD表示，用SPSS13.0 统计软 蓝紫色或浅蓝色。 件进行组间数据差异性的ANOVA检验，P＜0.05为 根据尼氏染色结果，猫初级视皮层可分为 差异具有统计学意义。 6层，从外向内依次为分子层（I）、外颗粒层 （Ⅱ）、外锥体层（III）、内颗粒层（IV）、内 2 结 果 锥体层（V）和多形层（VI） （图1A-C），与 尼氏染色切片中，初级视皮层层次分明，神经 已有报道一致。 图1 盐酸氯胺酮处理组（A，D）、乌拉坦处理组（B，E）及对照组（C，F）猫初级视皮层灰质各层的尼氏染色神经元 Figure 1 Nissl-stained neurons in each layers of the primary visual cortex in ketamine-treated (A, D）, urethane-treated (B, E) and control (C, F) cats A~C：视皮层第I、II-III、IV、V、VI层；D~F：视皮层第III层椎体细胞。Scale bar=50 µm。 A−C: Layer I, II-III, IV, V and VI of visual cortex; D−F: Pyramidal cells in layer III of visual cortex. Scale bar=50 µm. 实验组和对照组视皮层中均分布有c-fos免疫 1）。神经元密度在组内个体间无显著差异（盐酸氯 阳性细胞，免疫阳性物质主要集中在细胞核区域， 胺酮组：F =0.831，P=0.438；乌拉坦组：F (2, 150） (2, 胞核呈褐色或棕褐色，神经元胞体及轴突、树突处 =0.615，P=0.542；对照组：F =1.971，P=0.143)。 150) (2, 150) 染色较浅，呈棕色或浅棕色（图2A-I），符合c-fos 多因素方差分析结果显示，初级视皮层各层的 免疫阳性反应特征。 神经元密度在组间无显著差异（麻醉剂影响效应： 2.1 神经元密度统计与分析 F =2.323，P=0.099；麻醉剂处理与个体交叉效 (2, 450） 光镜下观察并统计实验组和对照组切片中初 应：F =0.344，P=0.848；麻醉剂处理与皮层 （2, 450） 级视皮层灰质第I、II-III、IV、V、VI层的神经元密 层次交叉效应：F =0.368，P=0.937) （表1)，表 （4, 450） 度。方差分析结果显示，各组内初级视皮层尼氏染 明各实验组猫初级视皮层各层的神经元密度与对照 色神经元密度存在显著层次差异（盐酸氯胺酮组： 组无显著差异。 F =253.256，P<0.0001; 乌拉坦组：F = 2.2 c-fos免疫阳性细胞密度统计与分析 (4, 150） (4, 150) 615.428，P<0.0001；对照组：F =524.08， 各组实验猫初级视皮层灰质各层中均分布有 (4, 150） P<0.0001）。表现为第I层尼氏染色神经元密度相对 呈褐色或棕褐色的c-fos免疫阳性神经元。其中，第 较低，第II-III、IV、V、VI层神经元密度相对较高； I层分布较稀少，免疫阳性细胞体积很小，第IV层稍 第IV层神经元密度相对低于第II-III、V和VI层，但 多，第II-III、V、VI层较密集，白质中未发现c-fos 第II-III、V、VI层之间的神经元密度无明显差异（表 免疫阳性神经元。 6期 王 珂等：氯胺酮和乌拉坦对猫视皮层细胞中刺激诱导的c-fos表达的影响 585 图2 盐酸氯胺酮处理组（A，D，G）、乌拉坦处理组（B，E，H）和对照组（C，F，I）猫初级视皮层的c-fos免疫阳性神 经元（圆圈指示） Figure 2 c-fos immunoreactive neurons (as circles indicated) in primary visual cortex of ketamine-treated (A, D, G), urethane-treated (B, E, H) and control (C, F, I) cats A～C：初级视皮层灰质冠状切面整体观（Scale bar=60 µm）；D～F：第V/VI层c-fos免疫阳性神经元，（Scale bar=25 μm）；G～I：第V层c-fos免疫 阳性椎体细胞，（Scale bar=15 μm）。 A-C: Coronal view of the gray matters of the primary visual cortex (Scale bar=60 μm); D-F: c-fos positive neurons in layer V/VI of the primary visual cortex (Scale bar=25 μm); G-I: c-fos positive pyramidal neurons in layer V of the primary visual cortex (Scale bar=15 μm). 组内方差分析结果显示，各组实验猫初级视皮 显示，乌拉坦对视皮层神经元c-fos蛋白表达无显著 层c-fos免疫阳性神经元密度存在显著层次差异 （盐 影响，而盐酸氯胺酮会显著抑制c-fos蛋白在视皮层 酸氯胺酮组：F =447.241，P<0.0001；乌拉坦 各层的表达，与对照组相比，盐酸氯胺酮组中初级 （4, 150） 组：F =610.816，P<0.0001；对照组：F = 视皮层第I、II-III、IV、V、VI层c-fos免疫阳性细胞 (4, 150) (4, 150） 461.945，P<0.0001)，表现为第I层c-fos免疫阳性细胞 密度分别降低66.88%、45.38%、41.22%、27.06%和 密度相对较低，第II-III、IV、V、VI层c-fos免疫阳性 28.32% （表1）。 细胞密度相对较高；第IV层c-fos免疫阳性细胞密度 2.3 c-fos蛋白免疫反应强度测量与分析 相对低于II-III、V、VI层，而II-III、V、VI层之间的 光镜下，盐酸氯胺酮组中c-fos蛋白免疫阳性神 免疫阳性细胞密度无明显差异（表1）。c-fos免疫阳 经元着色较浅，乌拉坦组和对照组c-fos阳性神经元 性细胞密度在组内个体间无显著差异（盐酸氯胺酮 着色较深。 组：F =0.546，P=0.58；乌拉坦组：F =0.851， 对各层（主要包括第II-III、IV、V、VI层）内 (2, 150) (2, 150) P=0.429；对照组：F 0.074，P=0.928）。 随机抽取的c-fos免疫阳性神经元进行平均光密度 (2, 150)= 组间方差分析结果显示，盐酸氯胺酮组中初级 分析，结果显示，盐酸氯胺酮组平均光密度值较乌 视皮层各层c-fos免疫阳性细胞密度较乌拉坦组和 拉坦组和对照组均显著降低 [F =173.771，P< (1, 60) 对照组均显著降低 [F =16.389，P<0.0001；F 0.0001；F =173.707，P<0.0001），降低程度分别 (1, 300) (1, (1, 60) =18.856，P<0.0001]，乌拉坦组中c-fos免疫阳性 为18.72%及19.41%。乌拉坦组c-fos免疫阳性反应强 300） 神经元密度与对照组无明显差异 [F =0.733， 度与对照组相比无明显差异[F =0.482，P=0.886] (2, 450) (1, 60) P=0.393] （图2A-I；表1）。三组数据比较分析结果 （图3）。 586 动 物 学 研 究 34卷 表1 盐酸氯胺酮处理组（KC1-3）、乌拉坦处理组（UC1-3）及对照组（NC1-3）猫的初级视皮层第I、II-III、IV、V、VI 层尼氏染色神经元和c-fos免疫阳性神经元密度 Table 1 Densities of Nissl-stained and c-fos immunoreactive neurons in layer I, II-III, IV, V and VI of the primary visual cortex in ketamine-treated (KC1-3), urethane-treated (UC1-3) and control (NC1-3) groups of cats 个体Subject 皮层分层Cortical layers I II-III IV V VI 尼氏染色神经元密度Densities of Nissl-stained neurons (cells/mm2) KC1 396±135.3 1736±261.4 1524±196.4 1664±232.6 1696±258.7 KC2 416±98.3 1800±181.8 1568±160.9 1728±223.7 1756±165.9 KC3 384±177.1 1784±235.7 1592±153 1736±220.1 1696±228.8 UC1 432±129 1780±183.1 1556±102.3 1736±125.4 1756±122.9 UC2 444±127.1 1812±156.7 1580±110.4 1764±160.5 1780±137.6 UC3 404±78.8 1744±116.5 1512±101.2 1784±128.2 1808±123.4 NC1 420±100.2 1760±161.1 1520±126.5 1720±148.5 1772±125.1 NC2 472±88 1828±147.3 1600±161.1 1788±160.1 1740±148.8 NC3 456±115 1844±125.7 1572±129.3 1788±165.5 1772±146.1 c-fos免疫阳性神经元密度Densities of c-fos immunoreactive neurons (cells/mm2) KC1 148±75.5* 940±136.3* 820±112* 1176±163.5* 1184±160.2* KC2 132±88.5* 960±129.3* 820±80.5* 1244±125.7* 1212±99.9* KC3 132±88.5* 892±117.8* 836±76.5* 1268±110* 1248±114.4* UC1 312±129 1620±183.1 1396±102.3 1736±125.4 1676±122.9 UC2 404±127.1 1624±192.5 1420±110.3 1720±103.3 1708±129.3 UC3 364±78.8 1664±116.5 1392±101.2 1704±128.2 1768±123.4 NC1 380±100.2 1720±161.1 1360±126.5 1680±148.5 1732±125.1 NC2 448±104.6 1708±147.3 1440±186.7 1668±160.1 1660±148.8 NC3 416±115 1684±125.7 1412±129.3 1708±165.5 1692±146.1 *：个体神经元密度显著低于UC1～3及NC1～3个体（P<0.05）。 *: Individual’s neuronal densities are significantly lower than UC1-3 and NC1-3 (P<0.05). 3 讨 论 已有研究表明，刺激因素和药物诱导的中枢神 经系统c-fos表达可显著被NMDA受体的拮抗剂阻 断，提示c-fos的诱导可能经NMDA受体介导 （Herrera & Robertson, 1990; Torres & Rivier, 图3 盐酸氯胺酮处理组（KC）、乌拉坦处理组（UC）和对 1993）。氯胺酮是临床手术或动物实验中常用的麻 照组猫（NC）初级视皮层c-fos免疫阳性神经元平均光密度 醉诱导药物，有研究证实，它是NMDA受体的非竞 （IOD）值 争性拮抗剂（Jin et al, 2013），因此，有可能会抑制 Figure 3 Average IOD (integrated optical density) value of c-fos immunoreactive neurons in the primary visual cortex of 光刺激激发的视皮层兴奋性突触活动，从而抑制视 ketamine-treated (KC), urethane-treated (UC) and control cats 皮层c-fos表达。本研究结果显示，盐酸氯胺酮急性 (UC) 麻醉处理组中视皮层各层的神经元密度与对照组 **: P<0.01 无显著差异，而光刺激诱导的c-fos蛋白免疫阳性细 以上分析表明，盐酸氯胺酮急性麻醉对猫初级 胞密度显著低于对照组，且阳性细胞中c-fos免疫反 视皮层刺激依赖的c-fos蛋白表达有显著的抑制作 应强度亦显著减弱，表明氯胺酮对视皮层神经元的 用，而乌拉坦对初级视皮层c-fos表达的影响不显著。 诱发反应活动主要起抑制作用，这与其他研究者报 6期 王 珂等：氯胺酮和乌拉坦对猫视皮层细胞中刺激诱导的c-fos表达的影响 587 道的氯胺酮能抑制伤害性刺激诱发的脊髓c-fos基 （McCardle & Gartside, 2012），但在正常麻醉剂量 因的表达结果相一致（Huang & Simpson, 1999）， 时作用较弱，在高麻醉剂量时可对多种受体通道产 且与氟烷、氧化二氮、异氟醚及异丙酚等其他麻醉 生影响（Hara & Harris, 2002）。我们以前的电生理 剂的作用较相似（Hagihira et al, 1997; Jinks et al, 研究发现，高剂量（高于正常麻醉剂量150 mg）乌 2002; Yan et al, 2002）。 拉坦能抑制视皮层神经元对视觉刺激的诱发反应， 乌拉坦为麻醉维持剂，因其对心血管和呼吸功 但未显著改变神经元对光栅刺激方位和运动方向 能的影响很小（Hara & Harris, 2002），常用于大鼠、 反应的选择性（Peng et al, 2011），而视皮层神经元 小鼠、家兔和猫等动物的神经生理学实验 对光栅或光条刺激方位及运动方向反应的选择性 （Devonshire et al, 2010; Peng et al, 2011）。离体实 强弱主要取决于皮层内抑制性递质（特别是GABA） 验观察发现，乌拉坦能显著抑制海马和视皮层神经 系统作用的强弱（Eysel et al, 1998; Leventhal et al, 元对刺激的诱发反应和突触反应强度（Shirasaka & 2003），据此推测，乌拉坦在高剂量时对神经元活 Wasterlain, 1995; Sceniak & Maciver, 2006），而在体 动的抑制作用可能不是通过GABA能抑制性递质系 实验显示，乌拉坦在正常麻醉剂量时对皮层神经元 统介导，而可能与谷氨酸受体的抑制或K+离子通道 的诱发反应活动无显著影响或影响很小（ Peng et 的激活有关（Daló & Hackman, 2013; Sceniak & al, 2011; Sceniak & Maciver, 2006）。 Maciver, 2006）。乌拉坦作用机制与物种、脑区和麻 本研究结果显示，正常麻醉剂量的乌拉坦组中 醉剂量的关系有待进一步研究。 刺激诱导的c-fos蛋白免疫阳性细胞密度和免疫反 总之，本研究通过观察立早基因 c-fos 蛋白的 应强度与对照组相比均无显著差异，提示正常麻醉 表达评价了两种常用麻醉剂在正常麻醉剂量时对 剂量的乌拉坦对视皮层神经元诱发反应活动的抑 视皮层神经元刺激诱发反应的影响，发现盐酸氯胺 制作用微弱。该结果支持以前的在体实验研究，与 酮能显著抑制视皮层神经元刺激诱导的 c-fos 蛋白 离体实验观察存在差异，而这些差异是否与麻醉剂 表达，而乌拉坦对刺激诱导的 c-fos 蛋白表达无明 量有关，尚有待进一步研究。乌拉坦影响中枢神经 显影响，表明氯胺酮对视皮层神经元的刺激诱发反 元活动的作用位点和机制还不甚清楚，有学者认为 应可能存在较强的抑制作用，而乌拉坦的抑制作用 它不影响兴奋性和抑制性突触传递，其抑制作用可 不显著。提示在视觉生理学实验中，乌拉坦相对于 能由通过改变细胞膜K+通道的通透性得以实现 氯胺酮而言是比较适合的麻醉维持剂。本研究结果 （Sceniak & Maciver, 2006）。另有学者认为，乌拉 为进一步探讨氯胺酮和乌拉坦对视皮层神经元活 坦可作用于兴奋性和抑制性递质受体通道 动的影响途径和细胞分子机制提供线索。 参考文献： Daló NL, Hackman JC. 2013. The anesthetic urethane blocks excitatory Hara K, Harris RA. 2002. The anesthetic mechanism of urethane: the effects amino acid responses but not GABA responses in isolated frog spinal cords. on neurotransmitter-gated ion channels. Anesthesia and Analgesia, 94(2): Journal of Anesthesia, 27(1): 98-103. 313-318. Devonshire IM, Grandy TH, Dommett EJ, Greenfield SA. 2010. Effects of Herrera DG, Robertson HA. 1990. N-methyl-D-aspartate receptors mediate urethane anaesthesia on sensory processing in the rat barrel cortex revealed activation of the c-fos proto-oncogene in a model of brain injury. by combined optical imaging and electrophysiology. European Journal of Neuroscience, 35(2): 273-281. Neuroscience, 32(5): 786-797. Höffken O, Haussleiter IS, Westermann A, Lötsch J, Maier C, Tegenthoff M, Eysel UT, Shevelev IA, Lazareva NA, Sharaev GA. 1998. Orientation Schwenkreis P. 2013. 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